Manica rubida

Manica rubida (Latreille, 1802) est une fourmi rouge de montagne au sens le plus littéral : grande, d’un rouge rouille brillant, aux longues pattes et dotée d’un aiguillon dont elle sait se servir. Elle vit dans les Alpes et d’autres massifs d’Europe centrale et méridionale, supporte des hivers longs et froids et niche sur les berges des rivières, dans les gravières et les prairies humides. Et elle détient un record : c’est la plus grande myrmicine d’Europe.

C’est aussi l’une des fourmis européennes les plus intéressantes pour la science. Son venin associe des peptides qui paralysent les insectes à une toxine qui active les canaux de la douleur des vertébrés ; sa reine fonde « à l’ancienne », en sortant chasser, et dans certaines vallées alpines ses colonies possèdent de petites reines qui travaillent comme des ouvrières. Dans cette fiche, nous distinguons ce qui est documenté, ce que racontent les éleveurs et ce que nous recommandons chez Antomas pour mener à bien une fondation qui, bien nourrie, avance bien plus vite que ne le disent les livres.

Biologie

La plus grande myrmicine d’Europe

Les myrmicines forment la sous-famille de fourmis la plus diversifiée du monde, et la plus grande de toutes les myrmicines européennes est M. rubida : c’est ce qu’indique Bernhard Seifert dans son ouvrage de référence sur les fourmis d’Europe centrale et du Nord, et ce que reprend l’étude de répartition publiée par Patrick Krapf en 2023. Ses ouvrières mesurent environ 6–8 mm, et les grandes reines 10–13 mm.

Elle ressemble à une Myrmica géante, et elle a d’ailleurs été placée dans ce genre pendant un temps. Mais un détail la trahit : le propodéum, la partie arrière du thorax, n’a pas d’épines, alors que les Myrmica en portent deux bien visibles. Avec sa taille et sa couleur rougeâtre uniforme, c’est l’une des fourmis les plus faciles à reconnaître dans les montagnes européennes. Les mâles, eux, sont entièrement noirs.

Du niveau de la mer ou presque à plus de 3 000 mètres

Seifert la décrit comme fréquente dans les montagnes européennes entre 500 et 2 000 m d’altitude. Mais en 2023, Krapf a réuni 611 données fiables provenant de 19 pays et a trouvé quelque chose de frappant : les extrêmes vont de 6 m, presque au niveau de la mer, dans le nord de l’Allemagne, à 3 098 m, dans les Alpes françaises. Plus de 3 000 m de dénivelé pour une seule espèce. La tranche qui compte le plus de données est celle de 1 000–1 500 m, et 74 se situent au-dessus de 2 000 m.

Elle vit surtout dans les Alpes (France, Suisse, Autriche et Italie), le Massif central et les Carpates, et atteint les Balkans, le Pinde, le Caucase, les monts Pontiques en Turquie, la Géorgie et la Russie. Et sa carte a un côté très moderne : 81 % des données utilisées par Krapf provenaient de plateformes de science participative comme iNaturalist et GBIF. Une bonne partie de ce que l’on sait de sa répartition, on le doit à des amateurs munis d’un appareil photo.

Et dans la péninsule Ibérique ?

La réponse est claire : il n’existe aucune donnée. La base GBIF, avec plus de 3 500 données de l’espèce, n’en compte aucune pour l’Espagne, le Portugal ou l’Andorre, et la liste des fourmis d’Andorre publiée en 2013, qui compte 75 espèces, ne l’inclut pas non plus. Le modèle de Krapf désigne bien les Pyrénées comme un massif au climat potentiellement favorable, mais un climat favorable n’est pas une population : à ce jour, M. rubida ne fait pas partie de la faune ibérique. Si elle apparaissait un jour dans les Pyrénées, ce serait une vraie nouvelle.

Berges de rivières, gravières et prairies humides

Seifert la définit comme une espèce « modérément thermophile et légèrement hygrophile » : elle aime le soleil, mais aussi un sol qui ne sèche pas complètement. Elle niche dans les prairies humides et les tourbières, sur les berges des rivières, dans les zones sableuses ouvertes, les plaines alluviales et les gravières, et même dans d’anciennes mines à ciel ouvert, sous des pierres ou directement dans le sol. Autour de l’entrée, elle élève de remarquables cratères de terre.

Dans la vallée du Giffre, dans les Alpes françaises, où Alain Lenoir et son équipe l’ont étudiée pendant des années, elle occupait les berges plates de la rivière, à la végétation clairsemée et parsemées de quelques aulnes, sur du sable et du gravier. Ses nids étaient vastes mais superficiels, et elle partageait le terrain avec Formica selysi et F. lemani. C’est le climat de la montagne tempérée : des hivers froids, avec de la neige pendant des mois en altitude, et des étés tempérés. Sous une pierre au soleil, en revanche, les chambres se réchauffent bien plus que l’air.

Cette dépendance aux sols frais la rend vulnérable. En Allemagne, elle est considérée comme quasi menacée, et Krapf souligne deux risques : les sécheresses dues au changement climatique et l’expansion de Formica fuscocinerea, qui la chasse des berges de basse altitude.

Un venin à double face

Peu de fourmis européennes ont un venin aussi étudié, et ce que les chercheurs y ont trouvé est un arsenal à deux fonctions : des peptides pour chasser les insectes et des toxines pour se défendre contre les vertébrés.

En 2019, Heep et ses collègues ont isolé un peptide de seulement dix acides aminés, le U-MYRTX-MANr1, et l’ont testé sur le puceron du pois. Le venin complet, à 1 mg/ml, a tué tous les pucerons en 24 heures. Le peptide isolé les paralysait de façon réversible, réduisait leur survie et leur descendance, qui baissait de 26 %, et leur faisait perdre du liquide par la blessure. Les auteurs le proposent comme point de départ pour de nouveaux bio-insecticides.

En 2020, Touchard et ses collègues ont décrit le répertoire complet : 13 « myrmicitoxines ». Testées sur la mouche Lucilia caesar, plusieurs se sont révélées être des insecticides efficaces : la U20-MYRTX-Mri1a et trois toxines de la famille U10 paralysaient les mouches de façon irréversible, et la U13-MYRTX-Mri1a était la plus rapide, même si son effet disparaissait en 24 heures.

Δ-MYRTX-Mri1a : la toxine qui active les canaux de la douleur

Parmi les myrmicitoxines de Touchard figurait un peptide de 20 acides aminés, alors appelé U3-MYRTX-Mri1a, qui n’avait aucun effet sur les mouches. En 2023, une étude publiée dans Nature Communications a découvert pourquoi : c’est une toxine sélective des vertébrés.

• Elle active les canaux sodiques NaV1.6 des neurones sensoriels et, dans une moindre mesure, les NaV1.7, des acteurs clés de la transmission de la douleur.
• Dans des cultures de neurones sensoriels de souris, elle a activé 52 % des cellules ; avec les canaux sodiques bloqués par la tétrodotoxine, seulement 2,9 %.
• Injectée dans la patte de souris, elle a provoqué des comportements douloureux proportionnels à la dose.

Elle s’appelle aujourd’hui Δ-MYRTX-Mri1a, delta-myrmicitoxine-Mri1a. Selon l’étude, de nombreuses fourmis possèdent des toxines conçues pour infliger de la douleur aux vertébrés et protéger ainsi le nid. Chez M. rubida, les deux stratégies cohabitent dans le même aiguillon : des peptides pour chasser et une toxine pour que quiconque fourre son museau dans le nid y réfléchisse à deux fois.

À quel point sa piqûre fait-elle mal ?

Elle fait mal, et les scientifiques qui l’ont étudiée sont d’accord : Lenoir la décrit comme « très douloureuse », et Heep et ses collègues parlent d’une « piqûre douloureuse ». Elle ne figure pas dans l’indice de douleur de Schmidt, et la toxine de la douleur identifiée provoque chez la souris une douleur modérée, moins intense que celle des toxines d’autres fourmis de la même étude.

En 2025 ont en outre été publiés les deux premiers cas connus d’anaphylaxie dus à sa piqûre : une mère et sa fille vivant en Suisse ont souffert d’urticaire, de malaise et d’oppression thoracique après avoir été piquées. Un entomologiste a identifié la fourmi, et toutes deux présentaient des anticorps contre un allergène du venin de guêpe. Elles se sont rétablies. Ce sont des cas exceptionnels, mais ils laissent deux messages clairs : cette fourmi se manipule toujours à la pince, et nous ne la recommandons pas aux personnes allergiques aux piqûres d’insectes.

Une fondation « archaïque » dans une sous-famille moderne

La plupart des reines de myrmicines et de formicines fondent de façon claustrale : elles s’enferment et élèvent leurs premières ouvrières sans manger, sur leurs réserves. Celle de M. rubida, non. Sa fondation est semi-claustrale : pendant qu’elle élève son premier couvain, elle sort chercher de la nourriture.

En 1969, Le Masne et Bonavita l’ont décrite sous un titre éloquent : la fondation des sociétés « selon un type archaïque » par une fourmi appartenant à une sous-famille évoluée. Archaïque, parce que c’est ce que font de nombreuses ponérines et d’autres lignées anciennes de fourmis. Pour l’élevage, c’est la clé : une reine de M. rubida a besoin de manger des protéines pour mener à bien ses premières ouvrières (voir « Fondation : d’abord, un tube avec une mini-arène »).

Un demi-million de spermatozoïdes et une colonie qui grandit lentement

À quel point cette fondation est-elle lente ? Lenoir et ses collègues ont récolté une centaine de reines lors d’un essaimage dans les Alpes françaises, en mai 1996, et ont suivi leurs fondations pendant deux saisons, à 24–25 °C et avec cinq mois de repos à 10 °C entre les deux. Voici les résultats :

• Au cours des 15 premiers jours, chaque reine a pondu en moyenne 28,2 œufs ; fin août, la ponte s’était presque arrêtée.
• À la fin du troisième mois, chaque colonie comptait en moyenne 1,06 ouvrière.
• À la fin du deuxième été, 5,14 ouvrières.
• 82 % des fondations ont survécu aux trois premiers mois, et 33 % jusqu’à la fin de la deuxième période.

Les reines manquaient-elles de sperme ? Non : elles stockaient en moyenne 524 000 spermatozoïdes, entre 20 % et 50 % de ce que porte un mâle, et cette réserve ne diminuait pas pendant la fondation. Les auteurs ont attribué cette lenteur à la fondation semi-claustrale ou à une adaptation au climat de montagne, tout en reconnaissant qu’une partie de la mortalité pouvait être liée aux conditions d’élevage. Et il y a eu une surprise : dans quatre cas, une femelle fécondée qui avait encore ses ailes a fondé une colonie. Les éleveurs qui la nourrissent abondamment racontent une autre histoire, bien plus rapide (voir « Croissance : du laboratoire aux éleveurs »).

Les microgynes : de petites reines qui travaillent comme des ouvrières

En 1998, dans une colonie de la vallée du Giffre, Lenoir et son équipe ont trouvé, à côté des grandes reines ou macrogynes, de nombreuses femelles ailées nettement plus petites qu’elles : les microgynes. Des années plus tard, des colonies à microgynes s’étendaient sur quelque 6 km de la vallée et dans d’autres localités alpines. L’étude, publiée en 2010, est l’une des plus curieuses consacrées à l’espèce :

• Deux tailles bien distinctes. La largeur de la tête est en moyenne de 2,02 mm chez les macrogynes et de 1,61 mm chez les microgynes.
• Elles ne volent pas. Elles passent l’hiver dans le nid, avec leurs ailes.
• Elles travaillent comme des ouvrières. Elles ramassent le couvain aussi vite que les ouvrières et sortent fourrager : dans un nid, on a compté 53 microgynes différentes en train de fourrager en une seule heure.
• Elles ne se reproduisent presque jamais. Elles ont une spermathèque, mais des ovaires non développés, et sur 38 microgynes disséquées, une seule était fécondée.

S’agit-il de formes de dispersion ou de parasites sociaux ? Le titre de l’article pose les deux hypothèses, et la question reste ouverte. Ce qui est clair, c’est qu’une petite femelle ailée qui s’occupe des larves n’est pas forcément une deuxième reine.

Des pistes de pyrazine et la « manicone »

En 1986, Attygalle et ses collègues ont trouvé dans sa glande à venin quatre alkylpyrazines et ont montré que l’une d’elles, la 3-éthyl-2,5-diméthylpyrazine, déclenche un suivi de piste très marqué : la glande à venin ne fait pas que charger l’aiguillon, elle balise aussi les chemins. Curieusement, ses ouvrières suivent aussi les pistes d’autres myrmicines, comme Myrmica rubra et Tetramorium caespitum.

Une autre vedette chimique sort de la glande mandibulaire. En 1988, Bestmann et ses collègues en ont identifié les composants volatils et ont élucidé la structure d’une molécule baptisée d’après le nom du genre : la manicone. La même année, Cammaerts et ses collègues ont étudié l’effet de cette sécrétion sur le comportement des ouvrières. Et en 1996, Hefetz et ses collègues ont montré que la sécrétion de la glande postpharyngienne, celle qui accumule l’« odeur coloniale », module leur agressivité.

Élevées avec Formica selysi : les colonies mixtes du laboratoire

Dans la vallée du Giffre, M. rubida et Formica selysi se partagent les berges de la rivière. Au laboratoire, la chercheuse française Christine Errard est allée plus loin : elle a élevé ensemble les deux espèces, issues de sous-familles différentes, pour étudier comment une fourmi apprend à reconnaître ses congénères. En 1994, elle a suivi le développement de cette reconnaissance entre espèces, et en 1991, avec Corbara, elle s’est demandé comment s’organisent ces colonies artificielles : forment-elles une véritable colonie mixte ou deux colonies parallèles qui partagent le nid ?

Ce sont des expériences très contrôlées qui révèlent quelque chose de fascinant : la reconnaissance des congénères s’apprend. Mais ce n’est pas une recette : à la maison, M. rubida se garde seule (voir « Ce qu’il ne faut pas faire »).

Peu de reines, des milliers d’ouvrières et des voisines qui se battent

Les colonies ont généralement une seule reine, et parfois quelques grandes reines reproductrices : le plus souvent monogynes, rarement oligogynes, résume Lenoir. Une colonie mature peut compter plusieurs milliers d’ouvrières, monomorphes et sans caste de soldats.

Il n’y a pas d’agression entre congénères, mais avec les voisines, c’est une autre histoire : Lenoir décrit des colonies fermées et agressives entre elles, avec de véritables combats entre nids proches, et selon Cammaerts et Cammaerts, l’agressivité augmente avec la distance entre les nids. Envers le monde extérieur, en revanche, c’est une fourmi calme : Heep et ses collègues la décrivent comme peu agressive, mais avec des ouvrières qui réagissent aussitôt à toute perturbation et défendent la colonie par de puissantes piqûres.

Des vols de printemps et des sexués qui passent l’hiver à la maison

Selon Seifert, les vols nuptiaux ont lieu de fin avril à mi-juin, le matin et par temps ensoleillé ; dans la vallée du Giffre, ils se concentrent fin mai et début juin. Le plus curieux, c’est le calendrier des sexués : ils naissent fin juin, passent l’hiver à l’intérieur du nid et ne s’envolent qu’au printemps suivant. C’est logique en montagne : les jeunes reines partent au début de la saison et ont tout l’été devant elles pour fonder.

La seule Manica d’Europe

Le genre Manica est petit : ses autres espèces vivent en Amérique du Nord et au Japon, et M. rubida en est à la fois l’espèce type et la seule représentante européenne. Parmi ses parentes nord-américaines figure même une parasite sociale sans ouvrières, M. parasitica.

Latreille l’a décrite en 1802 sous le nom de Formica rubida, à partir d’une reine des environs de Lyon ; elle est ensuite passée par Myrmica avant d’aboutir à Manica, le genre créé par Jurine en 1807. Rubida vient du latin rubidus, « rougeâtre », et lui va comme un gant. Manica signifie en latin « manche » ou « gantelet », et aussi « menottes » ; pourquoi Jurine a choisi ce nom, nous n’avons pas pu le découvrir.

Taille et morphologie

Grande myrmicine élancée, aux longues pattes, avec un aiguillon fonctionnel et une taille à deux nœuds.

• Coloration selon la littérature. Ouvrières jaune ambré à brun rougeâtre, avec la partie postérieure du premier segment du gastre sombre.
• Coloration de nos colonies. Rouge rouille brillant sur tout le corps et sur les pattes, qui sont longues. La reine a le gastre un peu plus sombre.
• Propodéum. Sans épines, contrairement aux Myrmica.
• Taille. Deux nœuds, le pétiole et le postpétiole.
• Ouvrières. Monomorphes, sans caste de soldats.
• Reines. Macrogynes de 10–13 mm et, dans certaines populations alpines, microgynes nettement plus petites.
• Mâles. Noirs et brillants.
• Nymphes. Nues, sans cocon.

Mesures approximatives

• Ouvrières : 6–8 mm (Bernard, 1968, cité par Lenoir et al., 2010) ; d’autres sources scientifiques donnent 5–8 mm et environ 6–9 mm.
• Macrogynes : 10–13 mm ; largeur de la tête, 2,02 mm en moyenne ; largeur du thorax, 1,45 mm.
• Microgynes : largeur de la tête, 1,61 mm en moyenne ; largeur du thorax, 1,08 mm.
• Mâles : largeur de la tête yeux compris, 1,04–1,06 mm en moyenne ; aucune longueur totale publiée.

Ce sont des mesures tirées d’articles scientifiques. Nous ne donnons pas les longueurs de reines et de mâles qui circulent sur les sites de boutiques et de vulgarisation, car elles ne proviennent pas d’études.

Élevage en captivité

Difficulté : 3/5 – Avancé

Une fois installée, ce n’est pas une espèce compliquée : elle mange de tout, n’a pas besoin de chaleur, s’adapte bien à un nid en plâtre et suit le rythme des saisons d’une fourmi européenne. Alors, pourquoi un 3/5 ?

• Une fondation semi-claustrale. La reine a besoin de manger, et beaucoup : il faut la nourrir souvent, avec de petites proies, sans laisser les restes s’accumuler.
• Des petites colonies sensibles. Elles souffrent si le nid se dessèche ou si elles manquent de protéines.
• Une vraie diapause. 4–5 mois de repos au froid chaque hiver.
• L’aiguillon. Elle pique, et se manipule toujours à la pince.

Et elle en vaut vraiment la peine. C’est la plus grande myrmicine d’Europe, d’un rouge magnifique, facile à observer dans l’aire de chasse et dotée d’une biologie pleine d’histoires. Voir une reine sortir de sa chambre pour aller chercher sa proie est un spectacle que n’offrent pas les espèces claustrales.

Paramètres recommandés

• Température du nid : 20–25 °C pendant la saison active ; pendant la fondation, 24–25 °C, la température à laquelle ont été élevées les fondations de l’étude de Lenoir.
• Pas de forte chaleur : si vous chauffez, que ce soit en douceur, sur un côté du nid et avec un thermostat. Certains éleveurs chauffent la chambre de la reine à 25–28 °C pendant les deux premières semaines ; chez Antomas, nous préférons ne pas dépasser 24–25 °C.
• Aire de chasse : à température ambiante.
• Humidité : une partie du nid humide et une autre plus sèche, jamais détrempée (voir « Humidité : un sol frais, jamais détrempé »).
• Eau : toujours disponible, dans un tube à essai avec de l’eau et du coton dans l’aire de chasse.
• Lumière : il suffit de leur laisser la zone sombre dans le nid et l’aire de chasse éclairée, avec un cycle normal jour-nuit.
• Diapause : 4–5 mois, de novembre à mars, à environ 5–10 °C (voir « Diapause »).

Fondation : d’abord, un tube avec une mini-arène

Chez Antomas, nous vendons des reines fondatrices avec couvain : des reines qui ont déjà commencé leur colonie dans un tube à essai, avec des œufs, des larves ou des nymphes. Comme sa fondation est semi-claustrale, la reine ne peut pas rester enfermée dans le tube en vivant sur ses réserves. C’est pourquoi le premier montage que nous recommandons est celui-ci :

• Tube avec mini-arène. Reliez le tube à une mini-arène, une petite aire de chasse avec couvercle, où vous déposerez la nourriture. Ainsi, elle sort chasser sans s’exposer, et vous pouvez la nourrir sans ouvrir le tube.
• De l’eau dans le tube. Vérifiez de temps en temps que le coton reste humide et qu’il reste de l’eau dans le réservoir : les petites colonies souffrent si elles se dessèchent.
• Une chaleur douce et stable. À 24–25 °C, avec la zone du couvain dans l’obscurité. Certains éleveurs racontent que leurs reines ne pondaient pas à 21–22 °C tant qu’ils n’avaient pas monté la température.
• De petits repas fréquents. Des proies que la reine peut porter jusqu’au couvain : Thermobia, petits morceaux de blatte ou de ver de farine et pattes de grillon (voir « Alimentation »).
• Propreté. Retirez les restes de la mini-arène avant qu’ils ne s’abîment.

Si la reine effiloche le coton, les éleveurs y voient un signe de faim : donnez-lui davantage de protéines. Quand la passer au nid ? Quand le tube devient trop petit, se salit ou manque d’eau. Nous la transférons par renversement (voir « Arrivée et déménagement ») dans un petit nid en plâtre, le Qbik Wild One P 1C.

Fourmilières recommandées

Chez Antomas, nous recommandons les fourmilières Qbik Wild d’Anthouse, qui sont en plâtre : elles retiennent l’humidité dont a besoin une espèce des sols frais et permettent d’avoir une partie plus humide et une autre plus sèche. Pour commencer, après le tube avec mini-arène, le Qbik Wild One P 1C :

Qbik Wild One P 1C

Pour grandir, quand la colonie remplit le premier, le Qbik Wild Duo P 2C :

Qbik Wild Duo P 2C

Agrandissez quand vous voyez le couvain entassé ou beaucoup d’ouvrières immobiles dans l’aire de chasse, faute de place à l’intérieur. Mais ne prenez pas les devants : dans un nid trop grand pour la colonie, l’humidité est plus difficile à contrôler et les chambres en trop finissent en dépotoirs. Complétez le montage avec ces détails :

• Une barrière d’huile minérale et un couvercle bien ajusté (voir « Évasions et barrières »).
• Une aire de chasse avec un peu de sable, ou de sable mêlé d’argile, et une ou deux pierres plates : elles aiment déplacer des particules.
• De l’eau toujours disponible, dans un tube à essai avec du coton, et un abreuvoir pour les liquides sucrés, jamais sur du coton.

Humidité : un sol frais, jamais détrempé

C’est une espèce « légèrement hygrophile » : elle niche dans des sols qui retiennent l’humidité, et les petites colonies sont sensibles au dessèchement. Mais elle ne vit pas dans la boue : ses nids se trouvent dans des terrains bien drainés, de sable et de gravier. La règle est simple : une partie du nid humide et une autre plus sèche, pour que la colonie choisisse où placer le couvain.

• Humidifiez le plâtre petit à petit, en suivant les instructions de la fourmilière, sans inonder les chambres.
• Ne mouillez pas directement la chambre de la reine.
• Si vous voyez de la condensation sur les parois ou de la moisissure, il y a trop d’humidité ou des restes oubliés.

Alimentation

Protéines : plus il y en a, mieux c’est. C’est la clé de cette espèce, surtout pendant la fondation, et c’est la philosophie d’Antomas : si vous faites l’entretien tous les jours et retirez les restes, mieux vaut suralimenter, car la colonie comprend qu’elle dispose de plus de ressources et grandit plus vite et en plus grand nombre. Si vous ne pouvez pas nettoyer souvent, mieux vaut ne pas suralimenter : la nourriture en trop pourrit et attire moisissures et acariens.

Pour la reine et les petites colonies, la proie idéale est petite et tendre, d’une taille que la reine peut porter. Notre préférée est Thermobia domestica : elle a juste la bonne taille, et la reine peut la porter seule jusqu’au couvain. Les morceaux de nymphe de blatte, les petits morceaux de ver de farine d’un demi-centimètre et les pattes de grillon conviennent aussi, mais jamais de grillons entiers ni de grosses proies à côté d’une reine seule.

Quand la colonie grandit, changez de type d’insecte d’une semaine à l’autre, pour qu’elles ne mangent pas toujours la même chose :

• Grillons, Acheta domesticus, en morceaux au début et entiers quand la colonie est déjà grande.
• Blattes turques, Shelfordella lateralis, surtout de petites nymphes.
• Blattes d’Argentine, Blaptica dubia, en morceaux ou sous forme de nymphes, pour les colonies moyennes et grandes.
• Vers de farine, Tenebrio molitor, en morceaux.
• Mouches et Drosophila, qu’elles acceptent aussi volontiers.

Selon les éleveurs, elles tuent avec leur aiguillon des insectes plus grands qu’elles, si bien qu’une colonie installée accepte aussi de petites proies vivantes. Et achetez les insectes auprès d’un fournisseur fiable : des insectes traités aux insecticides peuvent tuer la colonie.

Liquides sucrés. Dans la nature, elles récoltent le miellat des pucerons. Variez les sucres : chez Antomas, nous recommandons le nectar Blue Sugar d’Anthouse 4–5 fois par semaine et un autre liquide sucré ou nectar 1–2 fois par semaine. Vous pouvez aussi ajouter un peu de protéines au nectar. Proposez-les toujours dans un abreuvoir et jamais sur du coton, car le coton moisit et gâte le liquide très vite. Utilisez un abreuvoir traditionnel ou fait maison, où la goutte reste « étalée » et accessible, et renouvelez-le avant qu’il ne fermente. Pour la reine dans sa mini-arène, une gouttelette sur un petit morceau de papier d’aluminium suffit.

Eau : toujours, dans le tube à essai avec du coton de l’aire de chasse.

Croissance : du laboratoire aux éleveurs

D’après l’expérience de Lenoir, M. rubida semble désespérément lente : une ouvrière par colonie au bout de trois mois et cinq après deux saisons. Mais les auteurs eux-mêmes soupçonnaient les conditions d’élevage, et les éleveurs ont montré depuis qu’elle peut aller beaucoup plus vite.

Le cas le mieux documenté figure dans un guide d’éleveurs polonais traduit sur le forum Formiculture en 2026. L’un d’eux a installé cinq reines tout juste capturées début mai et a noté leur chronologie :

• Premières larves : environ 24 jours après la capture.
• Premières nymphes : au bout de cinq semaines.
• Premières ouvrières : au bout de 58 jours.
• Les cinq reines ont produit des ouvrières, et sa colonie a atteint environ 100 ouvrières avant sa première diapause.

Le secret ? Une chaleur stable et beaucoup de protéines : tous les quelques jours avant l’apparition des larves et, dès qu’elles sont apparues, deux fois par jour, en morceaux que la reine pouvait porter jusqu’au couvain. C’est une expérience d’éleveurs, pas une expérience contrôlée, mais elle cadre avec la règle que nous appliquons chez Antomas à toutes les espèces : plus il y a de protéines, mieux et plus vite elles grandissent. Les premières ouvrières sont petites, et leur taille augmente à chaque génération.

Arrivée et déménagement

À la réception de votre reine, laissez-la se reposer dans un endroit calme et sombre, vérifiez que le tube contient de l’eau et reliez-le à sa mini-arène. Quand vient le moment de la passer dans la fourmilière, chez Antomas nous le faisons par renversement : nous ouvrons le tube dans l’aire de chasse, près de l’entrée du nid, et faisons glisser doucement la reine, les ouvrières et le couvain, en aidant les retardataires avec un pinceau doux.

• Préparez tout à l’avance : la fourmilière humidifiée, la barrière d’huile en place et le tube d’eau dans l’aire de chasse.
• Travaillez au-dessus d’un plateau et gardez la pince à portée de main : n’oubliez pas qu’elles piquent.
• Laissez la zone du nid dans l’obscurité, pour que les ouvrières y portent le couvain tout de suite.

Utilisez la même méthode lorsque vous passerez la colonie dans le Qbik Wild Duo P 2C.

Diapause

C’est une fourmi de montagne, avec une diapause marquée : dans la nature, elle se repose à peu près d’octobre à mars. Dans l’étude de Lenoir, les fondations ont passé cinq mois à 10 °C entre une saison et la suivante, puis ont poursuivi leur développement. Chez Antomas, nous recommandons une diapause de 4–5 mois, de novembre à mars, à environ 5–10 °C :

• Baissez la température progressivement, sur deux ou trois semaines, et remontez-la de la même façon à la fin.
• Quelques jours avant de commencer, arrêtez les protéines.
• Pendant la diapause, de l’eau toujours disponible et, tout au plus, un peu de liquide sucré. Ne laissez jamais geler.
• À la fin, reprenez les protéines dès que vous voyez de l’activité.

Est-elle obligatoire ? Certains éleveurs soutiennent qu’une colonie bien soignée peut sauter son premier hiver, d’autres que la reine a besoin du froid. Pour nous, c’est clair : c’est une espèce de montagne, et la diapause fait partie de sa vie. De plus, la forcer ne sert à rien : des éleveurs racontent qu’en réchauffant leurs colonies en novembre, les grosses larves ne se nymphosaient pas. Ces larves passent l’hiver sans problème et se nymphosent au printemps.

Comportement en captivité

Calme, mais avec un aiguillon. Au quotidien, c’est une fourmi calme, voire un peu réservée, mais si l’on ouvre ou que l’on cogne le nid, les ouvrières sortent aussitôt le défendre. Peu agressive et très défensive, comme la décrivent les scientifiques.

Pistes et chasse. Quand une fourrageuse trouve de la nourriture, elle balise le chemin et d’autres arrivent aussitôt. Et voir une ouvrière immobiliser avec son aiguillon un grillon plus grand qu’elle est l’un des moments les plus spectaculaires avec cette espèce.

Observer sans crainte. Chez Antomas, nous pensons que les fourmis sont là pour qu’on en profite, qu’on les observe et qu’on apprenne d’elles, pas pour être cachées. Il suffit de leur laisser leur zone sombre dans le nid et l’aire de chasse éclairée, et de les observer avec délicatesse, en intervenant et en les stressant le moins possible.

Signaux d’alerte :

• Une reine qui ne pond pas ou un couvain qui n’avance pas en pleine saison : il manque presque toujours de la chaleur ou des protéines.
• Une reine qui effiloche le coton : elle a faim.
• De la condensation sur les parois ou de la moisissure : trop d’humidité ou des restes oubliés.
• Beaucoup d’ouvrières immobiles dans l’aire de chasse, faute de place à l’intérieur : il est temps d’agrandir.

Évasions et barrières

Selon les éleveurs, elles grimpent bien, et avec une fourmi qui pique, mieux vaut qu’aucune ne s’échappe. Chez Antomas, nous recommandons une barrière d’huile minérale :

• Une bande d’huile minérale sur la partie haute des parois de l’aire de chasse, fine et continue. Renouvelez-la quand elle accumule de la poussière ou des débris.
• Un couvercle bien ajusté, y compris sur la mini-arène de la fondation.
• Aucune fente dans les raccords, les bouchons et les tubes, et rien qui puisse servir de pont jusqu’à la barrière.

Manipulation et sécurité

Ouvrières et reines piquent, et la piqûre fait mal. Rien d’inquiétant si vous travaillez calmement et suivez trois règles :

• Toujours à la pince, une pince entomologique souple, ou avec un pinceau doux ; jamais avec les mains.
• N’ouvrez que le nécessaire et travaillez lentement.
• Nous ne la recommandons pas aux personnes allergiques aux piqûres d’insectes (voir « À quel point sa piqûre fait-elle mal ? »).

Et ne la relâchez jamais dans la nature : elle ne vit pas dans la péninsule Ibérique, et les fourmis élevées à la maison ne doivent en aucun cas être relâchées.

Ce qu’il ne faut pas faire

• Laisser la reine enfermée dans un tube sans issue : elle a besoin de sa mini-arène pour manger.
• Lésiner sur les protéines pendant la fondation ou laisser des restes sans nettoyer.
• Mettre de grosses proies entières à côté d’une reine seule.
• Leur infliger une forte chaleur ou chauffer tout le nid.
• Laisser le nid se dessécher ou détremper la chambre de la reine.
• Sauter la diapause ou réchauffer la colonie en automne pour « l’accélérer ».
• Mettre les liquides sucrés sur du coton ou les laisser s’épuiser.
• Leur donner toujours le même insecte.
• Les manipuler avec les mains.
• Réunir des reines ou des colonies, ou la mélanger à d’autres espèces, même si elle a été élevée avec Formica selysi au laboratoire.
• Laisser des fentes, des couvercles mal ajustés ou la barrière sans la renouveler.
• La relâcher dans la nature.

Sources scientifiques

Cette fiche d’élevage repose sur la littérature scientifique consacrée à Manica rubida, sur les données de répartition de l’espèce et sur l’expérience d’Antomas et d’autres éleveurs. Principales références :

1. Lenoir, A., Devers, S., Marchand, P., Bressac, C. & Savolainen, R. (2010). Microgynous queens in the Paleartic ant, Manica rubida: dispersal morphs or social parasites? Journal of Insect Science 10: 17. doi:10.1673/031.010.1701
2. Lenoir, A., Bressac, C., Le Guisquet, A.-M. & Chevrier, C. (1999). Étude sur les fondations des colonies chez Manica rubida : production d’ouvrières et stock de spermatozoïdes des reines. Actes des Colloques Insectes Sociaux 12: 131–134. PDF (sans DOI)
3. Krapf, P. (2023). Contribution of the public to the modelling of the distributions of species: occurrence and current and potential distribution of the ant Manica rubida. European Journal of Entomology 120: 137–148. doi:10.14411/eje.2023.017
4. Heep, J. et al. (2019). Identification and functional characterization of a novel insecticidal decapeptide from the myrmicine ant Manica rubida. Toxins 11: 562. doi:10.3390/toxins11100562
5. Touchard, A. et al. (2020). Venom peptide repertoire of the European myrmicine ant Manica rubida: identification of insecticidal toxins. Journal of Proteome Research 19: 1800–1811. doi:10.1021/acs.jproteome.0c00048
6. Robinson, S. D. et al. (2023). Ant venoms contain vertebrate-selective pain-causing sodium channel toxins. Nature Communications 14: 2977. doi:10.1038/s41467-023-38839-1
7. Mencarelli, L., Sabine, A., Lantin, J. P., Forini Giacalone, I. & Ribi, C. (2025). Allergie au venin de la fourmi Manica rubida : une histoire de famille. Revue Française d’Allergologie 65: 104334. doi:10.1016/j.reval.2025.104334
8. Attygalle, A. B., Cammaerts, M.-C., Cammaerts, R., Morgan, E. D. & Ollett, D. G. (1986). Chemical and ethological studies of the trail pheromone of the ant Manica rubida. Physiological Entomology 11: 125–132. doi:10.1111/j.1365-3032.1986.tb00399.x
9. Bestmann, H. J. et al. (1988). Pheromones, 65. Identification of the volatile components of the mandibular gland secretion of the ant Manica rubida: structure elucidation, synthesis, and absolute configuration of manicone. Liebigs Annalen der Chemie 1988: 55–60. doi:10.1002/jlac.198819880111
10. Cammaerts, M.-C., Attygalle, A. B., Vostrowsky, O. & Bestmann, H. J. (1988). Ethological studies of the mandibular gland secretion of the ant Manica rubida. Journal of Insect Physiology 34: 347–350. doi:10.1016/0022-1910(88)90146-1
11. Hefetz, A., Errard, C., Chambris, A. & Le Negrate, A. (1996). Postpharyngeal gland secretion as a modifier of aggressive behavior in the myrmicine ant Manica rubida. Journal of Insect Behavior 9: 709–717. doi:10.1007/BF02213551
12. Corbara, B. & Errard, C. (1991). The organization of artificial heterospecific ant colonies. The case of the Manica rubida/Formica selysi association: mixed colony or parallel colonies? Behavioural Processes 23: 75–87. doi:10.1016/0376-6357(91)90107-B
13. Errard, C. (1994). Development of interspecific recognition behavior in the ants Manica rubida and Formica selysi reared in mixed-species groups. Journal of Insect Behavior 7: 83–99. doi:10.1007/BF01989829
14. Bernadou, A., Fourcassié, V. & Espadaler, X. (2013). A preliminary checklist of the ants (Hymenoptera, Formicidae) of Andorra. ZooKeys 277: 13–23. doi:10.3897/zookeys.277.4684